聚合酶鏈式反應是一種用于放大擴增特定的DNA（或RNA）片段的分子生物學技術，它可看作是生物體外的特殊DNA復制，PCR的特點，是能將微量的DNA大幅增加。因此，無論是化石中的古生物、歷史人物的殘骸，還是幾十年前兇殺案中兇手所遺留的毛發、皮膚或血液，只要能分離出一丁點的DNA，就能用PCR加以放大，進行比對。這也是“微量證據"的威力之所在。
1、引物的設計：
引物需要自己查找文獻或者自己設計，然后交給合適的生物公司來幫我們合成，合成引物，每管裝1OD。拿到引物后需要加水溶解，但是因為引物是看不見的，所以為了防止溶解過程中引物的丟失，拿到引物后先高速離心（10000rpm, 4°C離心2min）再進行加水溶解（ddH2O）。
水的體積按引物濃度稀釋100倍，溶解好的引物用小管分裝，每管裝50μl即可，分裝后放-20°C保存。
2、制作模板：
模板的制作可以直接借助試劑盒，一般情況下Trizol的試劑可以滿足需要，直接按照試劑盒提示來做就可以了。
3、建立體系、上機：
PCR需要用到的DNA聚合酶、buffer、dNTPs。而經常用的DNA聚合酶有Taq酶，買的同時會附送10×buffer(主要成分是KCl、Tris-HCl和MgCl2，有些還有(NH4)2SO4)。
做PCR之前要提醒大家一點，不是所有的PCR都用同樣的反應體系的，也就是說PCR體系里用到的試劑除了10×Taq Buffer以外，其它其實都是需要摸條件的，但是按大多數情況來說，需要調整的并不多，可能需要調整的主要試劑是MgCl2（其實是要調整Mg2+的濃度）；可能需要控制的條件主要是退火溫度。
4、跑膠驗證：
在電泳之前，需要進行凝膠的配制，凝膠液配制的過程并不復雜，先用天平稱取適量的瓊脂糖粉末，加入到一定體積的1×TAE（Tris、乙酸、EDTA）緩沖液中，微波爐加熱至沸騰，拿出來搖勻，幫助粉末溶解，反復沸騰多次直到粉末溶解。待溶液不燙手，將核酸染料加入溶液中搖勻，接著將溶液趁熱倒到做膠的凝膠板上，插上梳子（用來預留加樣孔），等半小時左右膠凝固拔下梳子，連膠帶板一起放到電泳槽中，加電泳液至淹沒整塊凝膠（電泳槽中的電泳液也用1×TAE緩沖液）。
然后將loading buffer與樣品混合，加入到凝膠小空（“梳子"形成的洞）中，DNA maker作為對照，同樣加入到篩孔中，然后插上電源開始跑膠就可以了，凝膠上有顏色的有兩條帶，等到前面的藍色帶跑到整塊膠的2/3處停止電泳（斷電），然后把膠拿出來，放到紫外光下觀察條。
